细胞培养（细胞培养皿）

本文目录一览：

• 1、什么叫细胞培养?
• 2、举例说明细胞培养的目的与用途?
• 3、细胞培养的意义
• 4、细胞培养的基本方法有哪些
• 5、细胞培养的具体步骤和要求以及注意事项
• 6、细胞培养步骤

什么叫细胞培养?

1、细胞培养是指从体内组织取出细胞摹拟体内出现环境，在无菌、适当温度及酸碱度和一定营养条件下，使期生长繁殖，并维持其结构和功能的一种培养技术。

2、细胞培养的概念：细胞培养也叫细胞克隆技术，在生物学中的正规名词为细胞培养技术。不论对于整个生物工程技术，还是其中之一的生物克隆技术来说，细胞培养都是一个必不可少的过程，细胞培养本身就是细胞的大规模克隆。

3、动物细胞培养（animal cell culture）：从动物机体中取出相关的组织，将它分散成单个细胞（使用胰蛋白酶或胶原蛋白酶）然后，放在适宜的培养基中，让这些细胞生长和增殖。

4、细胞培养 细胞培养技术也叫细胞克隆技术，在生物学中的正规名词为细胞培养技术。不论对于整个生物工程技术，还是其中之一的生物克隆技术来说，细胞培养都是一个必不可少的过程，细胞培养本身就是细胞的大规模克隆。

5、每传代一次称为“一代”。二倍体细胞一般只能传几十代，而转化细胞系或细胞株则可无限地传代下去。转化细胞可能具有恶性性质，也可能仅有不死性（Immortality）而无恶性。

举例说明细胞培养的目的与用途?

细胞培养目的与用途：科学研究 药物研究开发，如新药筛选，疫苗、基因工程药物、细胞工程药物、研究与开发、单克隆抗体制备等。基础研究，如药物作用机理、基因功能、疾病发生机理等研究。

目的：了解微生物的习性，细菌与某些疾病的关系。意义：有些细菌可以制作药物，食品与生物塑料，比如：泡菜、塑料餐具、抗生素药物。细胞培养也叫细胞克隆技术，在生物学中的正规名词为细胞培养技术。

具体来讲就是是为了方便观察细胞水平的生理活动，例如我做一种抗癌药物，就要试一试这种药物会不会杀死癌细胞，对癌细胞有那些影响，同时观察正常细胞会不会受影响。

植物组织培养 植物组织培养技术的应用范围：快速繁殖、培育无病毒植物，通过大规模的植物细胞培养来生产药物、食品添加剂、香料、色素和杀虫剂等。

针对植物的培养主要有植物组织培养、植物细胞培养、花药及花粉培养、离体胚培养以及原生质体培养这几个大类，每一种都还可可以继续细分为更具体的小类。

细胞培养的意义

1、生物医学研究细胞培养：细胞培养可以用于生物医学研究细胞培养，如疾病细胞培养的发病机制、细胞信号转导、细胞凋亡、细胞增殖、细胞分化、细胞遗传等方面的研究。同时，细胞培养也可以用于研究药物的作用机制，也可以用于寻找新的治疗方法。

2、⒈可以进行植物体外受精及 植物胚胎发育过程研究。⒉可以进行植物生长发育有关的重要基因或影响因素的研究。⒊可以方便地通过实验手段培育植物新品种。

3、意义：有些细菌可以制作药物，食品与生物塑料，比如：泡菜、塑料餐具、抗生素药物。细胞培养也叫细胞克隆技术，在生物学中的正规名词为细胞培养技术。

4、细胞培养目的与用途：科学研究 药物研究开发，如新药筛选，疫苗、基因工程药物、细胞工程药物、研究与开发、单克隆抗体制备等。基础研究，如药物作用机理、基因功能、疾病发生机理等研究。

5、细胞培养（Cell culture）是模拟机体内生理条件，将细胞从机体中取出，在人工条件下使其生存、生长、繁殖和传代，进行细胞生命过程、细胞癌变、细胞工程等问题的研究。

6、具体来讲就是是为了方便观察细胞水平的生理活动，例如我做一种抗癌药物，就要试一试这种药物会不会杀死癌细胞，对癌细胞有那些影响，同时观察正常细胞会不会受影响。

细胞培养的基本方法有哪些

1、细胞培养细胞培养的基本方法有贴壁培养、悬浮培养和固定化培养。贴壁培养主要适用于贴壁依赖性细胞。

2、细胞培养常用方法 细胞原代培养（primay culture） 又称初代培养细胞培养，即直接从机体取下细胞、组织、或器官、让他们在体外维持与生长。

3、进入细胞间开始细胞培养时，必须严格按照下列步骤操作：①确定所有的细胞操作用的溶液和耗材都已经消毒并检测没有问题，不确定的溶液和耗材请勿使用，除非特殊情况，不要借用别人的溶液。

4、细胞培养是在实验室中通过人工方法培育和繁殖细胞的过程，细胞培养的一般步骤包括：细胞株选择和准备、培养基配制和消毒、细胞接种、培养条件控制、细胞培养和维护、细胞检测和鉴定。

5、平板培养法：特点：单细胞在培养基中分布均匀，便于定点观察、易筛选；通气差，排泄物易积累造成细胞毒害。看护培养 特点：简便、成功率高；不能在显微镜下直接观察。

细胞培养的具体步骤和要求以及注意事项

细胞进入培养器皿后，立即放入培养箱中，使细胞尽早进入生长状态。

细胞培养是在实验室中通过人工方法培育和繁殖细胞的过程，细胞培养的一般步骤包括：细胞株选择和准备、培养基配制和消毒、细胞接种、培养条件控制、细胞培养和维护、细胞检测和鉴定。

、首先用细胞分散法收获细胞，随时吸取少量消化液在镜下观察，并根据组织是否分散成细胞团或单个细胞，采取终止消化措施。用筛网滤掉未消化的组织块。

预热完全培养基（贴壁和半贴壁细胞还需要预热胰酶和PBS）。 细胞收集。（1）悬浮细胞直接收集培养容器中的所有细胞悬液至离心管中。

反复吹打细胞，使其成细胞悬液。以1：2或1：3进行分装，补充新鲜培养基，并在培养瓶上做好标记，注明代号、日期，轻轻摇匀，37℃CO2培养箱培养。细胞培养24h后，即可观察培养液的颜色及细胞的生长情况。

实验材料要新鲜，从活体分离材料后要低温保存，并尽快进行细胞分离实验。无菌操作。操作时用的培养液，可加平时细胞培养液5倍含量的青链霉素。用酶法分离细胞时，注意酶液的浓度和控制消化时间。

细胞培养步骤

1、细胞复苏 将冻存细胞从液氮中取出后，在37℃水浴锅内不断摇动促进其融化。移人15ml离心管中，加入10ml预热的DMEM完全培养基，轻轻吹匀，离心，2000rpmX2min，弃上清液。加入10mlDMEM培养基清洗，弃上清液。

2、细胞培养是在实验室中通过人工方法培育和繁殖细胞的过程，细胞培养的一般步骤包括：细胞株选择和准备、培养基配制和消毒、细胞接种、培养条件控制、细胞培养和维护、细胞检测和鉴定。

3、复苏 把冻存管从液氮中取出来，立即投入37℃水浴锅中，轻微摇动。液体都融化后（大概1-5分钟），拿出来喷点酒精放到超净工作台里。

4、吸出细胞培养液，放入离心管中，离心1000rpm5分钟。（2）吸掉上清液，加入适量之新鲜培养基，混和均匀后，依稀释比例转移至新的培养瓶中，以正常培养条件培养。

5、利用原代细胞培养做各种实验，如药物测试、细胞分化及病毒学方面的试验效果很好。其操作步骤如下。 剪切组织　先将所取得的组织，用D-Hanks或Hanks液清洗，以去除表面血污，并用手术镊去除黏附的结缔组织等非培养所需组织。

6、加入培养液l—2 ml（视细胞量），血球计数板计数。将细胞调整到5×105/ml左右，转移至25ml细胞培养瓶中，37℃下培养。 上述消化分离的方法是最基本的方法，在该方法的基础上，可进一步分离不同细胞。